Mecanismos de resistencia a la permetrina en dos poblaciones de Aedes aegypti del occidente de Venezuela

Leslie Álvarez González, Gustavo Ponce García, Adriana Flores Suarez

Resumen


Se determinó la resistencia a la permetrina en Aedes aegypti de los estados Trujillo y Zulia mediante bioensayos de botella. Los insectos derribados durante la hora de exposición fueron registrados y usados para calcular la Concentración Knock-down cincuenta (CK50) y los muertos a las 24 horas para la Concentración Letal cincuenta(CL50). La resistencia al derribo y post-recuperación fueron determinadas calculando del Factor de Resistencia FRCK50 y FRCL50, comparando los valores de CK50 y CL50 de las poblaciones de Ae. aegypti de campo con los de la cepa susceptible New Orleans obtenidos mediante análisis de regresión log-probit. Mecanismos metabólicos y no metabólicos asociados a la resistencia, fueron evaluados midiendo los niveles de las enzimas alfa-esterasas, beta-esterasas, oxidasas de función múltiple y glutatión-S-transferasas mediante la técnica de microplacas y determinando la frecuencia alélica I1016 por PCR alelo específico. Ambas poblaciones mostraron baja resistencia al derribo (FRCK50 < 5) y moderada resistencia post-recuperación (FRCL50 entre 5 y 10). Sobre-expresión de alfa-esterasas fue observada en la población Loma Linda la cual se correlacionó significativamente con la CL50.En la población Pampanito la frecuencia del alelo I1016 fue de 0,1 y en Loma Linda de 0,17, observándose homocigotos mutantes solo en esta última población. Se evidencia la presencia de mecanismos metabólicos y no metabólicos asociados a la resistencia al derribo y post-recuperación a la permetrina en las poblaciones bajo estudio, lo cual debe ser considerado antes de la aplicación de piretroides para el control de Ae. aegypti en la zona de estudio.

Palabras clave


: Culicidae, control químico, enzimas desintoxicantes, mutación kdr.

Texto completo:

PDF

Referencias


Abbott W. (1925). A method of computing the effectiveness of an insecticide. J. Econ. Entomol. 8: 265-267.

Agresti A. & Coull B. A. (1998). Approximate is better than ‘exact’ for interval estimation of binomial proportions. Am Stat. 52: 119-126.

Álvarez L., Castillo C., Oviedo M. & Briceño F. (2008). Diferencias en la susceptibilidad a la deltametrina en poblaciones de Aedes aegypti de Trujillo, Venezuela. Bol Mal Salud Amb. 48: 169-175.

Álvarez L., Ponce G., Oviedo M., López B. & Flores A. (2013). Resistance to Malathion and Deltamethrin in Aedes aegypti (Diptera:Culicidae)

from Western Venezuela. J Med Entomol. 50: 1031-1039.

Álvarez L., Ponce G., Saavedra-Rodriguez K., López B. & Flores A. (2015). Frequency of V1016I and F1534C mutations in the voltage-gated sodium

channel gene in Aedes aegypti in Venezuela. Pest Management Science. 71: 863-869.

AzirunMohdSofian. (2010). Permethrin resistance in Aedes aegypti (Linnaeus) collected from Kuala Lumpur, Malaysia. J. Asia-Pacific Entomol. 13:175-182.

Brengues C., Hawkes N. J., Chandre F., Mc Carroll L., Duchon S., Guillet P., et al. (2003). Pyrethroid and DDT cross-resistance in Aedes aegypti is

correlated with novel mutations in the voltagegated sodium channel gene. Med. Vet. Entomol. 17: 87-94

Brogdon W. G. (1984). Mosquito protein microassay.I. Protein determinations from small portions of single- mosquito homogenates. Comp. Biochem. Physiol. B. 79: 457-459.

Brogdon W. G. (1989). Biochemical resistance detection: an alternative to bioassay. Parasitol. Today. 5: 56-60.

Brogdon W.G. & Mc Allister J. C. (1998). Simplification of adult mosquito bioassays through use of time-mortality determinations in glass

bottles. J Am Mosq Control Assoc. 14: 159-164.

Brown A. W. A. (1986). Insecticide resistance in mosquitoes: a pragmatic review. J. Am. Mosq. Control Assoc. 2: 123-140.

CDC (2002). Evaluating awebbased instruction. (www.cdc.gov/ncidod/wbt/resistance/assay/microplate/index.htm). (Consultado: 2015, Agosto 18).

Coen E., Strachan T. & Dover G. (1982). Dynamics of concerted evolution of ribosomal DNA and histone gene families in the melanogaster species

subgroup of Drosophila. Department of Genetics, University of Cambridge. J. Mol. Biol. 158: 17-35.

El Universal (2016). Gobierno confirma que hay 319 casos de zika en el país. http://www.eluniversal.com/vida/160212/gobierno-confirma-que-hay319-casos-de-zika-en-el-país (Consultado: 2016, Febrero).

Finney D. (1971). Probit analysis. 3rd ed. Cambridge University Press, Cambridge, UK.

Flores A. E., Albeldaño W., Fernández S. I., Badii M. H., Loaiza H., Ponce G. G., et al.(2005). Elevatedαesteraselevelsassociatedwithpermethrintolerance

in Aedes aegypti (L.) from Baja California, México. Pesticide Biochemistry and Physiology. 82: 66-78.

Flores A. E., Grajales J., Fernandez S. I., Ponce

G. G., Becerra M., Lozano F. S., et al. (2006). Mechanisms of insecticide resistance in field populations of Aedes aegypti (L.) from Quintana

Roo, Southern México. J. Am. Mosq. Control Assoc. 22: 672-677.

Flores A. E., Ponce G. G., Silva B., Gutiérrez S., Bobadilla C., López M. B., et al. (2013).Wide spread cross resistance to pyrethroids in Aedes

aegypti (L.) from Veracruz State México. J. Econ. Entomol. 106: 959-969.

Flores A. E., Reyes S. G., Fernandez S. I., Sanchez F. & Ponce G. (2009). Resistance to permethrin in Aedes aegypti (L.) in Northern México.

Southwestern Entomologist. 34: 167-177.

Fonseca-González Y., Quiñones M., Lenhart A. & Brogdon W. (2010). Insecticide resistance status of Aedes aegypti (L.) from Colombia.

Pest Management Science. 67: 430-437. DOI: 10.1002/ps.2081

Harris A. F., Rajatileka S. & Ranson, H. (2010). Pyrethroid Resistance in Aedes aegypti from Grand Cayman. Am J Trop Med Hyg. 83: 277-

http://doi.org/10.4269/ajtmh.2010.09-0623

Hemingway J., Boddington R. G. & Harris J. (1989). Mechanisms of insecticide resistance in Aedes aegypti (L.) (Diptera: Culicidae) from Puerto

Rico. Bull Ent Res. 79: 123-30.

Hemingway J., Hawkes N., McCarroll L. & Ranson H. (2004). The molecular basis of insecticide resistance in mosquitoes. Insect Biochem. Mol. Biol. 34: 653-665.

Kasai S., Weerashinghe I., Shono T. & Yamagawa M. (2000). Molecular clonig, nucleotide sequence and gene expression of a cytochrome

P450 (CYP6F1) from the pyrethroid resistant mosquito, CulexquinquefasciatusSay. Insect Biochem Mol Biol. 30: 163-171.

Kasai S., Komagata O., Itokawa K., Shono T., Ng L. C., Kobayashi M.. & Tomita T. (2014). Mechanisms of Pyrethroid Resistance in the Dengue Mosquito Vector, Aedes aegypti: Target Site Insensitivity, Penetration, and Metabolism. PLoSNegl Trop Dis 8: e2948. doi: 10.1371/journal.pntd.0002948

Mazzarri M. B. & Georghiou G. P. (1995). Characterization of resistance to organophosphate, carbamate, and pyrethroid insecticides in field

populations of Aedes aegypti (L) from Venezuela.

J Am Mosq Control Assoc. 11: 315-322. MPPS (2014). Boletín Integral de Salud Ambiental. Semana Epidemiológica 41. Dirección General

de Salud Ambiental. www.iaes.edu.ve/descargas/boletin-dgsa/bidgsa2014.

MPPS (2015). Boletín Integral de Salud Ambiental. Semana epidemiológica 41. Dirección General de Salud Ambiental. www.iaes.edu.ve/descargas/

boletin-dgsa/bidgsa2015.

Molina de Fernández D., Bisset J., Rodríguez M., González J., Salas O., Barazarte H., et al.(1995). Estudio de la susceptibilidad a insecticidas

órganofosforados y piretroides en cepas de Aedes aegypti (Linn.) de cinco estados de Venezuela. Bol Dir Malariol San Amb. 35: 85-90.

Montella I. R., Martins A. J., Fernández V. P., Pereira J. B., Braga I. A. & Valle D. (2007). Insecticide resistance mechanisms of Brazilian Aedes aegypti populations from 2001 to 2004. Am J Trop Med Hyg. 77: 467-477.

OPS (2014). Número de casos reportados de fiebre chikungunya en las Américas. Oficina Sanitaria Panamericana. SE 41. www.paho.org.

Pérez P. & Enrique E. (2010). Resistencia cruzada a insecticidas piretroides en cepas de Aedes aegypti (Díptera: Culicidae) de municipios del estado Aragua. www.bvs.gob.ve/jornadas.2010/03122010.

Prapanthadara L., Promtet N., Koottathep S., Somboon P., Suwonkerd W., McCarroll L., et al. (2002). Mechanisms of DDT and permethrin

resistance in Aedes aegypti from Chiang Mai, Thailand. Dengue Bull. 26: 185-189.

Raymond M. (1985). Presentation d’ une programme d’ analyse logprobit pour Microordinateur cahiers Orstrom. Se´ r Ent Me´d Parasitol. 23: 117-121.

Rodríguez M., Bisset J., Mila L., Calvo E., Díaz C. & Soca L. (1999). Levels of insecticide resistance and its mechanisms in a strain of Aedes aegypti

of Santiago de Cuba. Rev Cubana Med Trop. 51:83-88.

Rodríguez M., Bisset J., Fernández D., Lauzan L. & Soca A. (2001). Detection of insecticide resistance in Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) from Cuba and Venezuela. J Med Entomol. 38: 623-628.

Rodríguez M., McCall P. J., Donnelly M. J., Ranson H., Hemingway J. & Black W. C. (2007). A mutation in the voltage-gated sodium channel

gene associated with pyrethroid resistance in Latin American Aedes aegypti. Insect Mol Biol. 16: 785-798.

Saavedra-Rodríguez K., Urdaneta-Marquez L., Rajatileka S., Moulton M., Flores A. E.,

Fernández-Salas I., et al. (2007). A mutation in the voltage-gated sodium channel gene associated with pyrethroid resistance in Latin American

Aedes aegypti. Insect Mol Biol. 16: 785-798.

Somwang P., Yanola J., Suwan W., Walton C., Lumjuan M., Prapanthadara L., et al. (2011). Enzymes based resistant mechanism in pyrethroids

resistant and susceptible Aedes aegypti strains from northern Thailand. Parasitol Research. 109:531-537.

Thanispong K., Satfiantriphop S. & Chareonviriyaphap T. (2008). Insecticide resistance of Aedes aegypti and Culex quinquefasciatus in Thailand. J Pest Sci. 33: 351-356.

Vaughan A. & Hemingway J. (1995). Mosquito carbxilesteraseEst alpha 2(1)(A2). Cloning and sequence of the full-length cDNA for a major

insecticide resistance gene worldwide in the mosquito Culex quinquefasciatus. J Biol Chem. 270: 17044-17049.

Yanola J., Somboon P., Walton C., Nachaiwieng W., Somwang W. & Prapanthadara L. (2011). High-throughput assays for detection of the F1534C mutation in the voltage-gated sodium channel

gene in permethrin-resistant Aedes aegypti and the distribution of this mutation throughout Thailand. Trop Med Int Hlth. 16: 501-509.

WHO (1981). Instructions for determining the susceptibility or resistance of mosquito larvae to insecticides. World Health Organization. Geneva

(WHO/VBC/81.80).


Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.




Copyright (c) 2021 Boletín de Malariología y Salud Ambiental